儀器： BI-200SMBI-MwA
使用 BI-200SM 測量蛋白質(zhì)樣品的分子量
摘要
靜態(tài)光散射（SLS）能夠測量多分散材料以及具有離散聚集數(shù)樣品（如蛋白質(zhì)）的平均分子量。合成聚合物本質(zhì)上是多分散的預期，非常適合使用這種技術(shù)進(jìn)行直接分析建設項目，用平均分子量來更為直觀地表示。以牛血清白蛋白（BSA）為例左右，這種蛋白質(zhì)有三種異構(gòu)體（分子量分別為 66.5kDa 又進了一步、133 kDa 和 200 kDa）智能化，此時平均分子量的含義可能就沒那么清晰。通過將使用傳統(tǒng)靜態(tài)光散射法在廣角光散射系統(tǒng)上測量的分子量與通過尺寸排阻色譜（SEC）實(shí)驗(yàn)得到的相對豐度進(jìn)行比較狀況，可以說明這種關(guān)系的性質(zhì)延伸。
引言
牛血清白蛋白（BSA）是一種易于獲取的蛋白質(zhì)，常被用作更復(fù)雜蛋白質(zhì)或蛋白質(zhì)藥物的替代品要求。眾所周知，在生理 pH 值和離子強(qiáng)度附近，BSA 處于三種具有明確聚集數(shù)的異構(gòu)體（單體運行好、二聚體國際要求、三聚體，N agg 分別為 1, 2, 3）的平衡狀態(tài)同期。雖然動態(tài)光散射（DLS）技術(shù)很難解決這些問題新趨勢，但還是存在一定的可能性。而靜態(tài)光散射（SLS）由于不具備分辨能力鍛造，只能得到一個單一的平均分子量新體系。
結(jié)果
這種表達(dá)方式（圖 1）被稱為 Zimm 圖 搖籃，它需要進(jìn)行濃度和角度依賴的光強(qiáng)測量。 Zimm 圖 是一種多角度創造、多濃度的外推法使用，分別外推至零角度和零濃度。測量的濃度分別為 10 mg/mL、3 mg/mL 和 2 mg/mL不難發現，散射角度為 θ = 60°、75°聽得懂、90°推動、105° 和 120o。測得的平均分子量約為 81 kDa設備製造，這個值對于 BSA 單體（66.5 kDa ）而言太大有效性，但又明顯低于二聚體（133 kDa）或三聚體（200 kDa）。為了理解這一點(diǎn)重要的，必須考慮到 BSA 單體與多聚體始終處于平衡狀態(tài)充分發揮。
單體 ? 二聚體 ? 三聚體
對于已知材料（在本例中為蛋白質(zhì)），其折光指數(shù)與濃度之間的關(guān)系是已知的高端化。如果該物質(zhì)的折光指數(shù)增量（dn/dc）已知全面展示，就可以確定其絕對濃度。
dn/dc 是折射率（ns）對濃度作圖并外推至零濃度時的斜率。其中講理論，ns 是溶液的折射率有望。該斜率在很寬的濃度范圍內(nèi)通常呈線性，因此極限斜率往往與稀溶液條件下的斜率相同解決問題。
這類似于在已知摩爾消光系數(shù)的條件下服務效率，通過在 280 nm 處的紫外吸光度測量來確定濃度。在下面所示的色譜實(shí)驗(yàn)（圖2）中導向作用，初始濃度是已知的蓬勃發展，因此即使沒有任何外部校準(zhǔn)，也可以確定每種物質(zhì)的相對豐度重要意義。
微分折光指數(shù)（圖2）與濃度成正比效率，因此可以從數(shù)量上對各組分（單體和二聚體）的相對含量進(jìn)行量化。雖然認(rèn)為存在三聚體，但由于其含量過低十大行動，僅通過折光指數(shù)無法識別重要性。在知道 BSA 單體和二聚體的相對濃度后，就有可能進(jìn)一步評估上文單獨(dú)使用 SLS 測量的結(jié)果（圖1）體系。通過對光散射中固有的光強(qiáng)權(quán)重的理解系統穩定性，可以根據(jù)這些組分的相對含量來估算平均分子量。
請注意重要組成部分，雖然通過示差（RI，圖 2）只能識別出二聚體和單體先進技術，但 MALS 圖譜（圖3）能清晰地識別出三聚體、二聚體和單體貢獻力量。在此合作，三個峰的相對面積隨散射角度而變化，其中最大的分子在小角度下的散射最為強(qiáng)烈前景。這種量化方法用于探究不同權(quán)重的影響，并將其與圖 1 中得到的分子量進(jìn)行比較。
平均分子量（MW）通過以下表達(dá)式計算得出：
單體 N=1 = 66.5 kDa
二聚體 N=2 = 2×66.5 kDa = 133 kDa
三聚體 N=3 = 3×66.5 kDa = 200 kDa
平均分子量（MW）= ( X% 單體 × 66.5 kDa ) + ( Y% 二聚體 × 133 kDa ) + ( Z% 三聚體 × 200 kDa )
表1 – 基于各組分（N=1進一步、2 和 3）相對豐度預(yù)測的平均分子量宣講手段。
| 平均分子量計算依據(jù) | 單體分子量（kDa） | 單體 | 二聚體 | 三聚體 | 平均分子量（kDa） |
|---|---|---|---|---|---|
| MALS 130 度角下的光強(qiáng)加權(quán) | 66.5 | 80.8% | 13.5% | 5.7% | 83.0 |
| MALS 105 度角下的光強(qiáng)加權(quán) | 66.5 | 80.0% | 13.6% | 6.5% | 84.1 |
| MALS 90 度角下的光強(qiáng)加權(quán) | 66.5 | 78.7% | 13.6% | 7.7% | 85.7 |
| RI 信號的數(shù)量加權(quán) | 66.5 | 89.1% | 10.9% | 0.10% | 74.0 |
示差信號能夠直接反映給定材料的濃度，而散射光強(qiáng)則是分子量與濃度共同作用的結(jié)果部署安排。因此競爭激烈，僅基于光強(qiáng)加權(quán)的分子量會高估較大分子（特別是二聚體和三聚體）的貢獻(xiàn)⌒Ч?；叵胍幌聦W習，單獨(dú)使用 SLS 測得的分子量約為81 kDa技術，這與表 1 所示基于光強(qiáng)加權(quán)得到的分子量結(jié)果非常接近。
總結(jié)
- 蛋白質(zhì)中通常有多種具有不同聚集數(shù)的組分處于平衡狀態(tài)（以 BSA 為例，聚集數(shù) N agg分別為1結構重塑、2、3）空白區。
- 從 Zimm 圖獲得的任何分子量都是這三種異構(gòu)體的平均值貢獻法治。
- 當(dāng)與色譜分離方法（在本案例中為 GPC）聯(lián)用時，折光指數(shù)可用于測量不同分子量組分的相對豐度應用優勢。
- 使用以下兩種方法計算平均分子量相對簡單：（i）光強(qiáng)加權(quán)相對較高；（ii）數(shù)量加權(quán)。
結(jié)論
靜態(tài)光散射可用于測量多分散樣品（包括蛋白質(zhì)）的分子量分享。生物樣品通常具有明確的聚集數(shù)（單體現場、二聚體等）。在平衡控制的自締合情況下（如蛋白質(zhì)二聚化）開展研究，各組分非常明確高質量，因此分子量將是彼此的整數(shù)倍。本文探討了多組分體系中靜態(tài)光強(qiáng)力量、分子量和相對濃度之間的關(guān)系可靠。
參考文獻(xiàn)
- Zimm, Bruno H., “Apparatus and Methods for Measurement and Interpretation of the Angular Variation of Light Scattering”, J. Chem. 16, 1099 (1948).
- J. C. Moore, “Gel permeation chromatography. I. A new method for molecular weight distribution of high polymers”, J. Polym. Sci., A-2, 835 (1964).
- Weiner, Bruce B., “Let There Be Light: Characterizing Physical Properties of Colloids, Nanoparticles & Proteins Using Light Scattering”, Amazon, (2019).